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常用技术资料

免疫染色实验方法和步骤

免疫染色(immunol staining)包括免疫荧光(immunol fluorescence)、免疫组化(immunol histochemistry)、免疫细胞化学(immunol cytochemistry)等,可以参考如下步骤进行操作。

1. 样品准备(Sample preparation)

⑴ 对于贴壁细胞:可以直接用多孔板,例如6孔板、24孔板等,培养细胞,然后到预定时间时进行固定等后续操作。也可以用洁净的盖玻片70%乙醇中浸泡后,用无菌的镊子放置到6孔板内,然后用无菌的生理盐水PBS培养液洗去残留的乙醇。这时就可以种入细胞进行培养,待细胞贴在盖玻片上生长良好后,即可进行固定等后续操作。

⑵ 对于悬浮细胞把细胞先在固定液中固定,然后把细胞滴加在载玻片上,干燥后细胞会紧贴在载玻片上。然后就可以进行后续操作。如果细胞的粘附能力不佳,可以在载玻片上用PDL等物质进行处理,以增强载玻片的粘附能力。

⑶ 对于冷冻切片:切片放置在载玻片上后,可以直接进行固定等后续操作。

⑷ 对于石蜡切片:

① 脱蜡:切片在二甲苯中脱蜡5分钟,再换用新鲜的二甲苯脱蜡,共用二甲苯脱蜡3次。无水乙醇5分钟,两次。90%乙醇5分钟,两次,70%乙醇5分钟,一次。蒸馏水5分钟,两次。

② 抗原修复:根据不同的抗原和抗体,可以选择把切片放置在如下抗原修复液中,10mM柠檬酸钠(pH6.0)或1mM EDTA(pH8.0)或10mM Tris(pH10.0)95℃加热12分钟,大约在30分钟内缓慢冷却至室温。

2. 固定 

● 可以使用适当的固定液固定细胞或切片,固定完毕后,可以用免疫染色洗涤液洗涤两次,每次5分钟。

3. 封闭(Blocking)

● 加入免疫染色封闭液,封闭60分钟。如果背景较高,可以4℃封闭过夜。

● 从封闭开始所有的步骤,一定要注意样品的保湿,避免样品的干燥,否则极易产生较高的背景。

● 在整个免疫染色过程中我们推荐使用侧摆摇床,侧向摆动速度比较缓慢,而且也容易让溶液覆盖样品。如果样品比较容易脱落,也可以把所有的步骤放置在桌面上静止进行,即封闭、抗体孵育、洗涤等步骤均不需摇动,但静止操作时宜适当延长作用时间或次数。

4. 一抗孵育(Primary antibody incubation)

● 参考一抗的说明书,按照适当比例用免疫染色一抗稀释液稀释一抗。

● 用微型台式真空泵吸尽封闭液,立即加入稀释好的一抗,室温或4℃在侧摆摇床上缓慢摇动孵育一小时。如果一抗孵育一小时效果不佳,可以4℃缓慢摇动孵育过夜。

● 回收一抗。加入免疫染色洗涤液, 在侧摆摇床上缓慢摇动洗涤5分钟。吸尽洗涤液后,再加入洗涤液,洗涤5分钟。共洗涤3次。如果结果背景较高可以适当延长洗涤时间并增加洗涤次数。

5. 二抗孵育(Secondary antibody inucubation) 

● 参考二抗的说明书,按照适当比例用免疫荧光染色二抗稀释液稀释荧光标记的二抗,或者用免疫染色(非荧光)二抗稀释液稀释辣根过氧化物酶(HRP)或生物素(Biotin)或碱性磷酸酯酶(AP)标记的二抗。

● 用微型台式真空泵吸尽洗涤液,立即加入稀释好的二抗,室温或4℃在侧摆摇床上缓慢摇动孵育一小时。

● 回收二抗。加入免疫染色洗涤液, 在侧摆摇床上缓慢摇动洗涤5分钟。吸尽洗涤液后,再加入洗涤液,洗涤5分钟。共洗涤3次。如果结果背景较高,可以适当延长洗涤时间并增加洗涤次数。

6. 蛋白检测(Detection of proteins) 

● 对于免疫荧光染色,此时已经可以直接到荧光显微镜下观察。

● 对于非免疫荧光染色可以选用DAB等适当的显色底物,或AB检测体系等进行后续检测。

7. 多重染色(Multiple staining)

● 如果进行的是免疫荧光染色,通常都可以进行多重染色。对于可以产生有色沉淀物的染色反应,例如DAB染色,一般不适合再进行多重染色。

● 多重荧光染色:可使用红色荧光、绿色荧光和蓝色荧光进行三重荧光染色。例如用免疫荧光染色试剂盒-抗小鼠Cy3进行红色荧光染色,随后可以用免疫荧光染色试剂盒-抗兔FITC进行绿色荧光染色,在完成上述两种染色后可以使用Hoechst染色试剂盒对细胞核进行染色,染色后为蓝色荧光。

● 用HE染色进行复染:免疫荧光染色后可以用苏木素伊红(HE)染色试剂盒进行HE染色。

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