储存条件：4℃运输，-20℃避光保存，有效期一年，尽量避免反复冻融。

产品介绍：

    本试剂盒是一种基于NBT的显色反应，通过比色来检测细胞、组织或其它样品中超氧化物歧化酶(Superoxide Dismutase, SOD)活性的试剂盒。SOD能催化超氧化物阴离子发生歧化作用，生成过氧化氢(H2O2)和氧气(O2)，是生物体内一种重要的抗氧化酶。本试剂盒采用经典的氮蓝四唑(NBT)显色法。通过黄嘌呤(Xanthine)及黄嘌呤氧化酶(Xanthine Oxidase, XO)反应系统产生超氧阴离子(O2-.)，将氮蓝四唑还原为蓝色的甲臜(Formazan)，后者在560nm处有强吸收。而SOD可清除超氧阴离子，从而抑制了甲臜的形成。反应液蓝色越深，说明超氧化物歧化酶活性越低，反之则酶活性愈高。据此通过比色分析就可以计算出超氧化物歧化酶活性水平。原理如下：

    本试剂盒的检测不受样品中过氧化氢的干扰。很多细胞和组织样品中含有内源性的过氧化氢，会干扰SOD的检测。本试剂盒通过添加适量过氧化氢酶等特殊方法，能有效去除常规样品中过氧化氢的干扰。例如，对于SOD标准品的检测，标准品中添加高达0.1mM的过氧化氢时，对于检测结果仍无显著影响。本试剂盒可以检测细胞或组织匀浆液上清、全血、红细胞抽提物、血清等生物样品中的SOD活性。

使用方法：

一、样品的准备：

1. 细胞样品的准备：1000-2000xg，4℃离心10 min收集细胞，用4℃预冷的PBS或生理盐水洗涤1-2遍。沉淀用预冷的PBS在4℃或冰浴进行匀浆(可以使用玻璃匀浆器或各类常见电动匀浆器)。随后匀浆液12000xg，4℃离心5 min，取上清液作为待测样品。

2. 组织样品的准备：动物用生理盐水(0.9% NaCl，含有0.16mg/mL肝素钠)灌流清除血液后获取组织样品。取适量的组织样品，加入4℃预冷的PBS在4℃或冰浴进行匀浆(可以使用玻璃匀浆器或各类常见电动匀浆器)。随后匀浆液12000xg，4℃离心5 min，取上清液作为待测样品。

3. 血浆或红细胞样品的准备：用抗凝管收集血液，颠倒混匀。600xg，4℃离心10分钟，移取上清至另一新的1mL离心管中，适量生理盐水稀释后即可作为血浆样本进行检测。红细胞样品可以参考上述步骤1细胞样品的制备方法，或其它不含Triton X-100等去垢剂的样品制备方法。

4. 上述样品准备完毕后可以BCA蛋白浓度测定试剂盒测定蛋白浓度。通常10-20μg 蛋白的细胞或组织匀浆液样品中的SOD平均活力约1个活力单位左右(不同细胞和组织的差异会比较大，该活力范围仅作为初步的参考)。每种样品准备20-100μg蛋白量通常已经足够用于后续检测。

5. 根据蛋白浓度和预计的蛋白使用量，用本试剂盒提供的SOD检测缓冲液适当稀释样品。例如小鼠肝脏组织10%匀浆液(组织和匀浆液的重量比为1:10)上清，通常需要稀释10-100倍。准备好的样品如果当天测定，可以冰浴保存；如果当天不能完成测定，可以-70℃冻存，但建议尽量当天完成测定。

二、试剂盒的准备工作：

1. NBT/酶工作液的配制：按照每个反应160μL的体积配置适量的NBT/酶工作液。均匀混合158ul的SOD检测缓冲液、1μL NBT和1μL酶溶液，即可配置成160uL NBT/酶工作液。根据待检测样品(包括标准品)的数量，配置适量的NBT/酶工作液。具体配置方法可以参考下表。配制好的NBT/酶工作液4℃或冰浴保存，可以在当天使用，但建议尽量现配现用。

注：由于酶溶液的用量较少且易沉降，必须注意在使用前先轻轻离心一下，然后适当混匀后再使用。

2. 反应启动液的配制：把试剂盒中的反应启动液(40×)融解后混匀，按照每1μL反应启动液(40×)加入39μL SOD检测缓冲液的比例进行稀释，混匀后即为反应启动工作液。根据待检测样品(包括标准品)的数量，配制适量的反应启动工作液。配制好的反应启动工作液4℃或冰浴保存，可以在当天使用，但建议尽量现配现用。

3. (可选做)SOD标准品准备：需自备SOD标准品，用本试剂盒提供的SOD样品制备液(当样品用试剂盒提供的SOD样品制备液制备时)或SOD检测缓冲液(当样品为血液等无需处理的样品时)将SOD标准品稀释至如下系列浓度：200U/mL，100U/mL，50U/mL，20U/mL，10U/mL，5U/mL，2U/mL。在随后的检测中可以各取20μL 参考样品进行检测。

注：为避免稀释后SOD酶活性的下降，SOD标准品宜现稀释现使用；本试剂盒对于SOD的检测并不需要SOD作为标准品，但可以使用SOD标准品作为阳性对照或作为对SOD活性定量的参考。

三、样品测定：

1. 参考下表使用96孔板设置样品孔和各种空白对照孔。并按下表依次加入待测样品和其它各种溶液。加入反应启动工作液后充分混匀。

注：加入反应启动工作液后反应即会开始，可以在低温操作或用排枪操作以减小各孔间因加入反应启动工作液的时间先后差异而导致的误差。

*如果样品有颜色或含有抗氧化物质，则需设置空白对照3；如果样品没有颜色并且也不含有抗氧化物则无需设置空白对照3。

2. 37℃孵育30分钟。

注：孵育25-35分钟检测出来的SOD活力无显著差异，但为保证检测结果的一致性，推荐孵育30分钟。

3. 在560nm测定吸光度，还可以选择设定600nm(或600nm以上，如650nm)作为参比波长，560nm吸光度的读数扣除参比波长的吸光度读数即可作为实测读数。

四、样品中总SOD活力的计算：

1. 抑制百分率的计算：

参考如下计算公式计算抑制百分率：

抑制百分率＝[(A空白对照1－A空白对照2)－(A样品－A空白对照3)]/(A空白对照1－A空白对照2)×100%

如果样品没有颜色并且也不含有抗氧化物，则A空白对照2=A空白对照3，此时可以把计算公式简化为如下形式：

抑制百分率＝(A空白对照1－A样品) / (A空白对照1－A空白对照2)×100%

如果计算出来的抑制百分率小于30%或大于70%，则通常需要把该样品重新测定。尽量使样品的抑制百分率在30-70%范围内。如果测定出来的抑制百分率偏高，则需适当稀释样品；如果测定出来的抑制百分率偏低，则需重新准备浓度较高的待测样品。

2. SOD酶活力单位的定义：在上述黄嘌呤氧化酶偶联反应体系中抑制百分率为50%时，反应体系中的SOD酶活力定义为一个酶活力单位(unit)。

注：SOD的活力单位的定义方式有很多种，不同的活力单位需根据其定义的不同进行适当换算。

3. SOD酶活力的计算：

待测样品中SOD酶活力单位＝抑制百分率/(1－抑制百分率)units

例如当抑制百分率为50%时，待测样品中SOD酶活力单位＝50%/(1－50%)＝1 unit；当抑制百分率为60%时，待测样品中SOD酶活力单位＝60%/(1－60%)＝1.5 units。

4. 根据样品的类型，细胞/组织的匀浆液/红细胞抽提液，可以根据样品的蛋白浓度和稀释倍数，将SOD活力单位换算为U/g或U/mg蛋白。如果样品为红细胞抽提液，可以根据血红蛋白含量，可换算为U/g血红蛋白或U/mg血红蛋白。

五、其他SOD酶活力计算的参考方案：

1. 可以先使用本试剂盒绘制SOD标准品的抑制百分率曲线，然后根据样品检测到的抑制百分率对比标准品的抑制百分率曲线计算出样品中的SOD酶活力单位。本方案仅供参考，使用本试剂盒时不必使用本方案进行检测和计算。此外，本方案需确保标准品的酶活力数据可靠，不会因为标准品的保存问题而导致实际酶活力下降。

2. SOD酶活力的动力学检测：

如果条件许可，使用本试剂盒时也可以使用动力学方法检测SOD的酶活力。通常在步骤三第1步后可以在37℃孵育同时在560nm连续测定吸光度30分钟。根据30分钟内的吸光度变化的斜率(K)计算出抑制百分率：

抑制百分率＝[(K空白对照1－K空白对照2)－(K样品－K空白对照3)]/(K空白对照1－K空白对照2)×100%

其余的计算方法同上述非动力学的计算方法。动力学方法的检测和计算更加精确一些，但检测起来相对要麻烦一些。使用本试剂盒通常使用非动力学方法即可。

注意事项：

1. 待测样品-70℃可保存1个月。需注意反复冻融会导致SOD部分失活。

2. 细胞或组织等样品制备时不能采用含有Triton X-100等去垢剂的溶液，否则会干扰本试剂盒的检测。

3. 抗氧化物会对本试剂盒的检测产生干扰，例如0.1mM Ascorbic acid，5mM GSH都会使测定出来的吸光度显著升高。所以需要设置使用说明中的空白对照3来消除样品中的抗氧化物的干扰。

4. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

5. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，严禁用于临床诊断或药品等用途。

产品说明书.pdf